ФармакологияСправочник

Определение

Микробиологическая диагностика — это совокупность исследований, которые устанавливают возбудитель инфекции и его чувствительность к антибиотикам. Её результат превращает эмпирическую терапию в целенаправленную: без неё невозможны деэскалация, обоснованный выбор препарата и надёжный контроль резистентности в стационаре. От качества диагностики зависит и безопасность пациента: ошибка на первом этапе — неверно взятый материал — делает бесполезными все последующие.

Главная мысль раздела: результат микробиологического исследования хорош настолько, насколько хорош образец и вопрос, с которым его отправили. Поэтому большая часть статьи посвящена преаналитическому этапу — тому, что делает врач и медицинская сестра у постели больного, а не лаборатория.

Результаты исследования чувствительности и фенотипы резистентности разбираются в статье «Определение чувствительности к антибиотикам и фенотипы резистентности».

Принципы забора материала

Универсальные правила одинаковы для любой локализации.

  • Материал берут непосредственно из патологического очага и по возможности до первой дозы антибиотика: после введения препарата чувствительность метода снижается и результат может оказаться ложноотрицательным. Если состояние тяжёлое и промедление опасно (септический шок, подозрение на менингит), терапию не откладывают ради посева.
  • Берут материал только по показаниям. Посев мочи у пациента без симптомов, мазок с поверхности раны без признаков инфекции или посев из нестерильных локусов при отсутствии клиники дают результат, который приведёт к лечению колонизации, а не инфекции.
  • Образец должен быть правильно собран, промаркирован и быстро доставлен. Направление содержит фамилию, имя, отчество пациента, возраст, отделение, номер истории болезни, диагноз, дату и точное время взятия, сведения о проводимой антибактериальной терапии и подпись направляющего врача. Эти сведения нужны лаборатории, чтобы интерпретировать результат.
  • Сбор и транспортировка должны быть оформлены стандартными операционными процедурами организации, которые опираются на национальный стандарт по ведению преаналитического этапа (ГОСТ Р 53079.4-2008) и методические указания по технике сбора и транспортировки биоматериалов в микробиологические лаборатории (МУ 4.2.2039-05).

Кровь на стерильность (гемокультура)

Кровь на посев — самое важное исследование при подозрении на бактериемию и сепсис. От техники зависит и чувствительность метода, и риск ложноположительных результатов.

ПараметрРекомендация
Число комплектовДва комплекта (иногда три) на один эпизод; каждый — отдельной венепункцией. При подозрении на эндокардит нужно три комплекта (выявляемость 96–98 %), четыре — около 99,8 % за 24 часа
Интервал между заборамиМеждународные рекомендации (IDSA/ASM 2024) не требуют разносить заборы во времени. Критерии качества помощи при сепсисе в России (приказ № 203н) предусматривают не менее двух заборов из вен разных верхних конечностей с интервалом 30 минут не позднее 1 часа от поступления, поэтому там, где применяется эта норма, ей и следуют
ОбъёмСамый важный фактор: 20–30 мл крови на комплект у взрослых, поровну в аэробный и анаэробный флаконы (около 10 мл на флакон); недозаполнение снижает выявляемость. У детей объём зависит от массы тела
Обработка кожиХлоргексидин или 2 % настойка йода (действует около 30 секунд, повидон-йод — 1,5–2 минуты). Хлоргексидин не рекомендуют детям младше 2 месяцев
МестоПредпочтительна периферическая венепункция, а не забор из катетера
ДоставкаВ лабораторию как можно быстрее, при комнатной температуре; не замораживать и не хранить в холодильнике
Частота контаминацииЦель — менее 3 %, оптимально 1 %

Практические следствия:

  • Загрязнение (из одного флакона выросли коагулазонегативные стафилококки или Corynebacterium spp.) отличают от истинной бактериемии по повторному высеву того же микроорганизма из параллельных проб. Рост Staphylococcus aureus или Candida из любого флакона всегда считают клинически значимым.
  • При бактериемии, вызванной S. aureus, повторные посевы берут каждые 24–48 часов до получения отрицательного результата; сохранение положительных посевов более 72–96 часов и лихорадка указывают на осложнённое течение (эндокардит, метастатические очаги).
  • При подозрении на эндокардит с отрицательными посевами назначают серологические исследования (Bartonella, Coxiella burnetii) и молекулярные методы на ткани клапана.

Другие виды материала

Мокрота и нижние дыхательные пути. Мокрота должна происходить из нижних дыхательных путей, а не из ротоглотки. Качество оценивают по окраске по Граму: в адекватном образце менее 10 плоских эпителиальных клеток в поле зрения при малом увеличении, а полиморфно-ядерных лейкоцитов больше 25. Образец, не прошедший оценку, не стоит отправлять в посев: рост ротоглоточной флоры только вводит в заблуждение. Для вентилятор-ассоциированной пневмонии применяют количественные пороги: эндотрахеальный аспират — не менее 10⁶ КОЕ/мл, бронхоальвеолярный лаваж — 10⁴, защищённая браш-биопсия — 10³ КОЕ/мл; эндотрахеальный аспират и лаваж не взаимозаменяемы.

Моча. Берут среднюю порцию струи после гигиенической обработки либо получают пробу одноразовой катетеризацией; не отправляют на посев кончики катетера Фолея и мочу из мешка у пациентов с постоянным катетером. Пробу исследуют в течение 30 минут или охлаждают (допускается консервант борная кислота); выдержка при комнатной температуре более 4 часов даёт ложный рост. Стандартный порог значимой бактериурии — 10⁵ КОЕ/мл одного уропатогена, но лаборатории всё чаще применяют 10⁴ и 10³ в зависимости от способа сбора; три и более вида обычно означают контаминацию. Бессимптомную бактериурию (в отличие от инфекции) не лечат, кроме беременных и перед инвазивными урологическими вмешательствами.

Ликвор берёт врач при люмбальной пункции в стерильную пробирку; доставляют немедленно. Раневое отделяемое берут из глубины очага, после удаления некротических масс и экссудата, лучше в транспортной среде; поверхностные мазки малоинформативны. Нативные испражнения можно доставлять без транспортной среды, если они поступят в лабораторию не позднее чем через 4 часа после сбора, иначе нужна транспортная среда.

Этапы лабораторного исследования

  1. Микроскопия с окраской по Граму — быстрый первый этап: показывает морфологию и отношение к красителю, качество образца и ориентировочного возбудителя. Результат за час может изменить стартовую терапию.
  2. Посев остаётся золотым стандартом. Классическими методами выделить возбудитель и получить его чувствительность быстрее чем за 48 часов крайне сложно; селективные хромогенные среды дают предварительный ответ о наличии MRSA, энтеробактерий-продуцентов β-лактамаз расширенного спектра и карбапенемаз уже через 18–24 часа.
  3. Идентификация методом MALDI-TOF масс-спектрометрии — главное технологическое достижение последних лет: определение чистой культуры занимает несколько минут и стоит недорого; разработаны методы идентификации непосредственно из флакона с положительной гемокультурой.
  4. Определение чувствительности — отдельная статья.
  5. Молекулярные методы (ПЦР в реальном времени) ускоряют обнаружение возбудителей и генов резистентности. В России разрешены синдромные панели на основе мультиплексной вложенной ПЦР, которые за около 1 часа после получения положительной гемокультуры выявляют 33 наиболее частых возбудителя и 10 генов устойчивости; аналогичные панели существуют для ликвора и отделяемого нижних дыхательных путей.

Ограничения молекулярных методов. ПЦР очень чувствительна, поэтому при исследовании в норме нестерильных локусов (дыхательные пути) положительный результат может отражать колонизацию, а не инфекцию. Молекулярные и экспресс-методы выполняют параллельно с классическими культуральными, а не вместо них.

Что дают быстрые методы

Быстрые тесты сокращают время до эффективной терапии, но влияние на исходы пока не доказано.

  • Добавление мультиплексной ПЦР к стандартной диагностике у пациентов с положительными гемокультурами сокращает медианное время до первой эффективной коррекции терапии с 64,5 до 23,2 часа и снижает долю персистирующей бактериемии (5,7 % против 11,5 %), но не меняет 30-дневную летальность и длительность госпитализации.
  • Быстрое определение чувствительности летальность не снижает (низкая достоверность данных).
  • Рекомендации по контролю антимикробной терапии подчёркивают, что быстрые методы работают, когда за результатом следует активное вмешательство специалиста (клинический фармаколог, микробиолог): без этого польза теряется.

Как читать результат

  • Колонизация и инфекция. Выделение микроорганизма не равно инфекции. Инфекцию подтверждают сочетание возбудителя из значимого материала, признаков воспаления (лихорадка, лейкоцитоз, СРБ, прокальцитонин) и поражения органа. Выделение полирезистентных штаммов (MRSA, ванкомицинорезистентные энтерококки, продуценты β-лактамаз расширенного спектра и карбапенемаз) требует мер инфекционного контроля даже при колонизации: изоляции, отдельного персонала, усиленной дезинфекции.
  • Контаминация. Учитывают вид микроорганизма, число положительных проб и источник материала.
  • Сроки. Результаты поступают поэтапно: микроскопия — часы, хромогенные среды — 18–24 часа, классическая идентификация и чувствительность — не раньше 48 часов, идентификация MALDI-TOF — минуты после роста, иммунохроматографические тесты — около 15 минут, синдромная ПЦР — около 1 часа. Врач должен знать, какой предварительный ответ уже можно получить, и звонить в лабораторию, если от него зависит решение.

Отчётность и микробиологические паспорта

Лаборатория регулярно (обязательно ежегодно, при необходимости ежеквартально или ежемесячно) предоставляет администрации и клиницистам отчёты об этиологии и чувствительности возбудителей внебольничных и госпитальных инфекций по подразделениям и нозологиям, с особым вниманием к реанимации. На их основе создают микробиологические паспорта отделений: структурированные, актуальные (обновляются каждые 6–12 месяцев) и доступные каждому врачу в любое время (постеры, карманные справочники, электронный доступ). Для анализа данных и построения паспортов используют общедоступные платформы AMRcloud и AMRnote. Подробнее об организации мониторинга — в статье «Правовое регулирование и организация антимикробной терапии в России».

Практический алгоритм

  1. Есть ли показание к исследованию? — Подозрение на бактериальную инфекцию и клинический очаг.; нет клиники (бессимптомная бактериурия, поверхностный мазок раны без воспаления) → материал не берут

  2. Подготовить материал до первой дозы антибиотика. — ; септический шок, подозрение на менингит → терапию не откладывают ради посева

  3. Выбрать правильный образец и собрать его. — ; кровь: 2 комплекта (3 при эндокардите) из разных вен, 20–30 мл на комплект, антисептик хлоргексидин или йод; мокрота: оценить качество (менее 10 эпителиальных клеток в поле зрения); моча: средняя порция или катетеризация, исследовать в течение 30 минут или охладить

  4. Оформить направление: — данные пациента, диагноз, время взятия, текущая антибактериальная терапия.

  5. Доставить немедленно — (кровь — при комнатной температуре, без охлаждения).

  6. Читать результат поэтапно: — микроскопия → предварительная идентификация → чувствительность.; выросли коагулазонегативные стафилококки в одном флаконе → вероятно контаминация, повторить посев; *S. aureus*, *Candida* или другие значимые возбудители → клинически значимы, повторные посевы до отрицательного

  7. Решить по клинике: — деэскалация, коррекция терапии, меры инфекционного контроля при полирезистентной флоре.

Типичные ошибки

  1. Посев после первой дозы антибиотика без необходимости.
  2. Недостаточный объём крови и недостаточное число комплектов.
  3. Забор крови из катетера вместо периферической вены.
  4. Отправка слюны вместо мокроты без оценки качества.
  5. Посев мочи без показаний и лечение бессимптомной бактериурии.
  6. Поверхностный мазок раны вместо материала из глубины очага.
  7. Невнесённая информация в направлении (время взятия, текущая терапия): лаборатория не может интерпретировать результат.
  8. Лечение колонизации — по результатам ПЦР нестерильных локусов или посева без клинических признаков инфекции.
  9. Игнорирование предварительных результатов и ожидание полного отчёта, когда решение нужно принимать сейчас.

Связи

Источники

  1. Программа СКАТ (практические рекомендации). 3-е изд., 2025: раздел 11 «Роль микробиологической лаборатории», раздел 12 «Микробиологический мониторинг и локальные схемы терапии».
  2. СанПиН 3.3686-21, глава XLIV.
  3. Приказ Минздрава России от 10.05.2017 № 203н «Об утверждении критериев оценки качества медицинской помощи».
  4. Miller JM, et al. Guide to utilization of the microbiology laboratory for diagnosis of infectious diseases: 2024 update by the IDSA and the ASM. Clin Infect Dis. 2024. PMID 38442248.
  5. Nicolle LE, et al. Clinical practice guideline for the management of asymptomatic bacteriuria: 2019 update by the IDSA. Clin Infect Dis. 2019;68(10):e83-e110. PMID 30895288.
  6. Barlam TF, et al. Implementing an antibiotic stewardship program: guidelines by the IDSA and SHEA. Clin Infect Dis. 2016;62(10):e51-e77. PMID 27080992.
  7. Kim KJ, et al. Clinical impact of rapid molecular diagnosis of bloodstream infections: a randomized controlled trial. Clin Infect Dis. 2026. PMID 42619534.
  8. Anton-Vazquez V, et al. Rapid versus standard antimicrobial susceptibility testing to guide treatment of bloodstream infection. Cochrane Database Syst Rev. 2021;5:CD013235. PMID 34097767.
Обновлено 24 октября 2026 г.